小鼠白细胞介素22ELISA试剂盒Mouse IL-22ELISA KIT - 小鼠ELISA试剂盒 - 细胞冻存液|胎牛血清|细胞株|细胞培养基|ELISA试剂盒|ECL发光液|国产血清|澳洲血清|完全培养基-上海哈哈体育生物科技有限公司



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    小鼠白细胞介素22ELISA试剂盒Mouse IL-22ELISA KIT
    货号:HM-021
    价格:¥3800.00
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    小鼠IL-22定量分析酶联免疫检测试剂盒

     

    本试剂盒仅供科研使用。用于体外定量检测小鼠血清、血浆或细胞培养上清液中的IL-22浓度。使用前请仔细阅读说明书并检查试剂组分是否完整, 如有产品包装破损或质量投拆,请在收到货一个月之内联系哈哈体育。

     

    IL-22简介:

    白细胞介素22(IL-22),属于IL-10细胞因子家族,该家族其它成员包括IL-10, IL-19, IL-20, IL-24 IL-26等,这些成员都有一部分相同的氨基酸序列,但生物功能却是迥异的。

    IL-22主要由活化的Th1型T细胞和NK细胞分泌,主要作用于上皮细胞和炎症反应,小鼠的IL-22cDNA编码含33个氨基酸信号肽的179个氨基酸的蛋白,与大鼠的IL-22有82%的同源性,与人的IL-10有78%的同源性。

    IL-22通过Th2细胞抑制IL-4的产生,能够在肝和胰脏内诱导产生急性相反应物,IL-22的信号都是通过都属于II型细胞因子受体的IL-22R和IL-10R-β/CRF2-4来介导的。

     

    检测原理:

    本试剂盒采用双抗体夹心ELISA法检测样本中小鼠IL-22的浓度。小鼠IL-22捕获抗体已预包被于酶标板上,当加入标本或参考品时,其中的小鼠IL-22会与捕获抗体结合,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。当加入生物素化的抗小鼠IL-22抗体后,抗小鼠IL-22抗体与小鼠IL-22接合,形成夹心的免疫复合物,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。随后加入辣根过氧化物酶标记的亲合素。生物素与亲合素特异性结合,亲合素连接的酶就会与夹心的免疫复合物连接起来;其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。最后加入显色剂,若样本中存在IL-22将会形成免疫复合物,辣根过氧化物酶会催化无色的显色剂氧化成蓝色物质,在加入终止液后呈黄色。通过酶标仪检测,读其450nm处的OD值,小鼠IL-22浓度与OD450值之间呈正比,通过参考品绘制标准曲线,对照未知样本中OD值,即可算出标本中IL-22浓度。

     

    小鼠IL-22定量分析酶联免疫检测试剂盒组成:

    组分

    规格(96T/48T)

    小鼠IL-22预包被板

    12条/6

    标准品稀释液

    10ml/5ml

    小鼠IL-22标准品

    2支/1支(冻干)

    小鼠IL-22生物素化抗体

    10ml/5ml

    亲和素连接的HRP酶

    10ml/5ml

    浓缩洗涤液 20×

    30ml/15ml

    TMB底物

    10ml/5ml

    中止液

    5ml/3ml

    封板胶纸

    3/2

    说明书

    1

    标本收集:

    1.标本的收集请按下列流程进行操作;

    A.细胞上清标本离心去除悬浮物后即可;

    B.血清标本应是自然凝固后,取上清,避免在冰箱中凝固血液;

    C.血浆标本,推荐用EDTA的方法收集

    D.若待测样本不能及时检测,标本收集后请分装,冻存于-20℃,避免反复冻融。

    2.血清标本不应添加任何防腐剂或抗凝剂;

    3.标本应清澈透明,检测前样本中如有悬浮物应通过离心去除。

    4.请勿使用溶血,高血脂或污染的标本检测,否则结果将不准确。

    注意事项:

    1.试剂盒请保存在28℃。

    2.浓缩洗涤液因在低温下可能有结晶,请水浴加热使结晶完全溶解后再配制工作液。

    3.标准品复溶加样后,剩余部份请丢弃。

    4.底物请勿接触氧化剂和金属。

    5.加样时,请及时更换枪头,避免交叉污染。

    6.严禁混用不同批号的试剂盒组份。

    7.充分混匀对保证反应结果的准性很重要,在加液后请轻轻叩击边缘以保证混匀。

    8.室温反应,请严格控制在25~28℃。

    9.洗涤过程是至关重要的,洗涤不充分会使精确度下降并导致结果误差较大。

    10.试验中标准品和样本检测时建议作双复孔。

    11.加样过程中避免气泡的产生。

    12.血清和血浆标本的检测时,检测抗体的孵育时间应适当延长。

     

    检测前准备工作:

    1.试剂盒自冰箱中取出后应置室温(25-28℃)平衡20分钟;每次检测后剩余试剂请及时于2~8℃保存。

    2.将浓缩洗涤液用双蒸水或去离子水稀释(1份加19份水)。

    3. 如有5×标准品稀释液用双蒸水或去离子水稀释(1份加4份水)。

    4.标准品:按标签复溶体积加入标准品稀释液使IL-22终浓度达到2000pg/ml,室温反应,请严格控制在25~28℃,静置15~20分钟后轻轻混悬(建议抽吸几次)待彻底溶解,用标准品稀释液倍比梯度稀释后依次加入检测孔中。(标准曲线取七个点,最高浓度为2000pg/ml,标准品稀释液直接加入作为0浓度.)

    图片2.png 

    洗涤方法:

    自动洗板机或人工洗板:每孔洗涤液为300ul,注入与吸出间隔15-30秒。洗板5次。最后一次洗板完成后将板倒扣着在厚吸水纸上用力拍干。

     

    实验过程需自备的材料:

    1.不同规格的加样枪及相应的枪头;   

    2.酶标仪;

    3.自动洗板机;                     

    4.去离子水或双蒸水;

     

    操作步骤:

    1.通过计算并确定一次性实验所需的板条数,取出所需板条放置在框架内,暂时用不到板条请放回铝箔袋密封,保存于4℃。

    2.建议设置本底较正孔,即空白孔,设置方法为该孔只加TMB显色液和中止液。每次实验均需做标准品对照并画出标准曲线。

    3.分别将标本或不同浓度标准品(100ul/孔)加入相应孔中,用封板胶纸封住反应孔,室温(25-28℃)孵育120分钟。

    4.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    5.加入生物素化抗体工作液(100ul/)。用封板胶纸封住反应孔,室温(25-28℃)孵育60分钟。    

    6.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    7.加入HRP酶结合物工作液(100ul/)。用封板胶纸封住反应孔,避光室温(25-28℃)孵育20分钟。

    8.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    9.加入显色剂TMB100ul/孔,避光室温(25-28℃)孵育20分钟。

    10.加入中止液50ul/孔,混匀后即刻测量OD450值。

     

     

    结果判断:

    1.复孔的值在20%的差异范围内结果才有效,复孔的值平均后可作为测量值。

    2.每个标准品或标本的OD值应减去本底校正孔的OD值。

    3.手工绘制标准曲线。以标准品浓度作横坐标,OD值作纵坐标,以平滑线连接各标准品的坐标点。通过标本的OD值可在标准曲线上查出其浓度。

    4.若标本OD值高于标准曲线上限,应适当稀释后重测,计算浓度时应乘以稀释倍数。

     

    典型数值和参考曲线

    浓度pg/ml

    典型OD1

    典型OD2

    OD平均值

    0

    0.069

    0.074

    0.0715

    62.5

    0.276

    0.251

    0.2635

    125

    0.47

    0.465

    0.4675

    250

    0.817

    0.806

    0.8115

    500

    1.187

    1.124

    1.1555

    1000

    1.729

    1.709

    1.719

    2000

    2.435

    2.384

    2.4095

    小鼠IL-22参考标准曲线

    1.png 

    注意:本图仅供参考,应以同次试验标准品所绘标准曲线计算标本含量。

     

    灵敏度,特异性和重复性:

    1.灵敏度:多次重复结果表明,最小检出量为22.6pg/ml。

    2.特异性:与小鼠IL-15,IL-20,IL-22R,IL-29,Leptin,LIF,MIF, TNF-α,TNF-β等没有交叉反应。

    3.重复性:板内,板间变异系数均<10%.

     

    参考文献:

    1. Pestka, S. et al. (2004) Annu. Rev. Immunol. 22:929.

    2. Xie, M.H. et al. (2000) J. Biol. Chem. 275:31335.

    3. Kotenko, S.V. and J.A. Langer. (2004) Int. Immunopharmacol. 4:593.

    4. Boniface, K. et al. (2005) J. Immunol. 174:3695.

    5. Nagalakshmi, M.L. et al. (2004) Int. Immunopharmacol. 4:679.

    6. Ikeuchi, H. et al. (2005) Arthritis Rheum. 52:1037.9.


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