小鼠白细胞介素18ELISA试剂盒Mouse IL-18 ELISA KIT - 小鼠ELISA试剂盒 - 细胞冻存液|胎牛血清|细胞株|细胞培养基|ELISA试剂盒|ECL发光液|国产血清|澳洲血清|完全培养基-上海哈哈体育生物科技有限公司



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    小鼠白细胞介素18ELISA试剂盒Mouse IL-18 ELISA KIT
    货号:HM-022
    价格:¥3800.00
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    小鼠IL-18定量分析酶联免疫

    检测试剂盒

    本试剂盒仅供科研使用。用于体外定量检测小鼠血清、血浆或细胞培养上清液中的IL-1O浓度。使用前请仔细阅读说明书并检查试剂组分是否完整。如有产品包装破损或质量投拆,请在收到货一个月之内联系哈哈体育。

     

    IL-18简介:

    白介18(IL-18)是一个18 kDa的细胞因子,结构上与IL-1极其相似,对T细胞的活化有重要影响。IL-18的前体缺少信号肽,前体由IL-1beta转换酶(ICE)裂解为成熟的IL-18。

    有报道称IL-18由下列细胞产生:树突状细胞、活化的巨噬细胞、凯夫勒细胞、角化细胞、肠内皮细胞、格根包尔氏细胞、肾上腺皮质细胞等。其中有报道称人的角化细胞是IL-18的主要产生源。

    IL-18对T辅助细胞起作用,其效果是与IL-12协同强烈刺激T辅助细胞产生IFN-γ。当然,IL-18也有许多其它的效用,包括刺激外周血中由单核细胞产生IFN-γ  GM-CSF水平的升高,刺激T细胞产生Th1类的细胞因子如IL-2、IFN-γ GM-CSF等,提高Th1类的细胞表面的Fas配体的表达。此外,在治疗肿瘤、感染和自身免疫方面,IL-18也是一个重要的预后指标。

     

    检测原理:

    本试剂盒采用双抗体夹心ELISA法检测样本中IL-18的浓度。IL-18捕获抗体已预包被于酶标板上,当加入标本或参考品时,其中的IL-18会与捕获抗体结合,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。当加入辣根过氧化物酶标记的抗小鼠IL-18抗体后,抗小鼠IL-18抗体与小鼠IL-18接合,形成夹心的免疫复合物,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。最后加入显色剂,若样本中存在小鼠IL-18蛋白将会形成免疫复合物,辣根过氧化物酶会催化无色的显色剂氧化成蓝色物质,在加入终止液后呈黄色。通过酶标仪检测,读其450nm处的OD值,小鼠IL-18浓度与OD450值之间呈正比,通过参考品绘制标准曲线,对照未知样本中OD值,即可算出标本中小鼠IL-18浓度。

     

    小鼠IL-18定量分析酶联免疫检测试剂盒组成:

    组分

    规格(96T/48T)

    小鼠IL-18预包被板

    12条/6

    5×标准品稀释液

    20ml/10ml

    小鼠IL-18标准品

    2支/1支(冻干)*

    抗体HRP结合物

    10ml/5ml

    20×浓缩洗涤液 

    30ml/15ml

    TMB底物

    10ml/5ml

    中止液

    5ml/3ml

    封板胶纸

    3/2

    说明书

    1

    标本收集:

    1.标本的收集请按下列流程进行操作;

    A.细胞上清标本离心去除悬浮物后即可;

    B.血清标本应是自然凝固后,取上清,避免在冰箱中凝固血液;

    C.血浆标本,推荐用EDTA的方法收集若待测样本不能及时检测,

    D.标本收集后请分装,冻存于-20℃,避免反复冻融。

    2.血清标本不应添加任何防腐剂或抗凝剂;

    3.标本应清澈透明,检测前样本中如有悬浮物应通过离心去除。

    4.请勿使用溶血,高血脂或污染的标本检测,否则结果将不准确。

    :样本如需稀释请用标准品稀释液稀释后再检测。

    注意事项:

    1.试剂盒请保存在28℃。

    2.浓缩洗涤液因在低温下可能有结晶,请水浴加热使结晶完全溶解后再配制工作液。

    3.标准品复溶加样后,剩余部份请丢弃。

    4.底物请勿接触氧化剂和金属。

    5.加样时,请及时更换枪头,避免交叉污染。

    6.严禁混用不同批号的试剂盒组份。

    7.充分混匀对保证反应结果的准性很重要,在加液后请轻轻叩击边缘以保证混匀。

    8.室温反应,请严格控制在2528℃。

    9.洗涤过程是至关重要的,洗涤不充分会使精确度下降并导致结果误差较大。

    10.试验中标准品和样本检测时建议作双复孔。

    11.加样过程中避免气泡的产生。

     

    样本的稀释:

    1. 血清或血浆样本5~30倍稀释,不同样本含量不一样,检测前需预实验,如无明确范围,可从5倍开始。

    2.细胞上清及尿样本稀释倍数根据预实验确定;

     

    检测前准备工作: 

    1.试剂盒自冰箱中取出后应置室温(2528℃)平衡20分钟;每次检测后剩余试剂请及时于28℃保存。

    2.将浓缩洗涤液用双蒸水或去离子水稀释(1份加19份水)。

    3.5×标准品稀释液用去离子水或双蒸水按1:4稀释成所需的体积;

    4.将检测抗体用检测抗体稀释液按标识提前10分钟配制成工作浓度;

    5.标准品: 按标签复溶体积加入标准品稀释液复溶使IL-18终浓度达到1500pg/ml,室温反应,请严格控制在2528℃,静置10~15分钟后轻轻混悬(建议抽吸几次)待彻底溶解,用标准品稀释液倍比梯度稀释后依次加入检测孔中。(标准曲线取七个点,最高浓度为100ng/ml,标准品稀释液直接加入作为0浓度.)下图为标准品稀释示意图。

    图片2.png 

    洗涤方法:

    自动洗板机或小鼠工洗板:每孔洗涤液为300ul,注入与吸出间隔15-30秒。洗板5次。最后一次洗板完成后将板倒扣着在厚吸水纸上用力拍干。

     

    实验过程需自备的材料:

    1.不同规格的加样枪及相应的枪头;   

    2.酶标仪;

    3.自动洗板机;                     

    4.去离子水或双蒸水;

     

    操作步骤:

    1.通过计算并确定一次性实验所需的板条数,取出所需板条放置在框架内,暂时用不到板条请放回铝箔袋密封,保存于4℃。

    2.建议设置本底较正孔,即空白孔,设置方法为该孔只加TMB显色液和中止液。每次实验均需做标准品对照并画出标准曲线。

    3.分别将稀释好的标本或不同浓度标准品(100ul/孔)加入相应孔中,用封板胶纸封住反应孔,室温(25~28℃)孵育120分钟。    

    4.洗板3次(重要提示,一定是三次),且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    5.每孔加入HRP抗体结合物工作液(100ul/)。用封板胶纸封住反应孔,室温(25~28℃)孵育60分钟。    

    6.洗板3次(重要提示,一定是三次),且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    7. 加入显色剂TMB100ul/孔,避光室温(25~28℃)孵育20分钟。

    8. 加入终止液50ul/孔,混匀后即刻测量OD450值。

    结果判断:

    1.复孔的值在20%的差异范围内结果才有效,复孔的值平均后可作为测量值。

    2.每个标准品或标本的OD值应减去本底校正孔的OD值。

    3.手工绘制标准曲线。以标准品浓度作横坐标,OD值作纵坐标,以平滑线连接各标准品的坐标点。通过标本的OD值可在标准曲线上查出其浓度。

    4.若标本OD值高于标准曲线上限,应适当稀释后重测,计算浓度时应乘以稀释倍数

    典型数值和参考曲线

    浓度ng/ml

    典型OD1

    典型OD2

    OD平均值

    0

    0.076

    0.086

    0.081

    46.875

    0.134

    0.218

    0.176

    93.75

    0.213

    0.339

    0.276

    187.5

    0.412

    0.55

    0.481

    375

    0.811

    1.015

    0.913

    750

    1.46

    1.62

    1.54

    1500

    2.603

    2.909

    2.756

    小鼠IL-18参考标准曲线

    1.png 

    注意:本图仅供参考,应以同次试验标准品所绘标准曲线计算标本含量

     

    灵敏度,特异性和重复性:

    1.灵敏度:多次重复结果表明,最小检出量为16.8ng/ml。

    2.特异性:与小鼠的IL-2, IL-4, IL-5, IL-6, IL-10, IL-12 p70, IL-13, IL-17及人IL-18等没有交叉反应。

    3.重复性:板内,板间变异系数均<10%.

     

    参考文献:

    1. Lalor, S.J. et al. (2011) J. Immunol. 186:5738.

    2. Gu, Y. et al. (1997) Science 275:206.

    3. Fehniger, T.A. et al. (1999) J. Immunol. 162:4511.

    4. Smith, D.E. (2011) J. Leukoc. Biol. 89:383.

    5. Elbim, C. et al. (2005) Clin. Diagn. Lab. Immunol. 12:436.

    6. Yoshimoto, T. et al. (2000) Nat. Immunol. 1:132.

    7. Kroeger, K.M. et al. (2009) J. Leukoc. Biol. 86:769.


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