小鼠血管细胞粘附蛋白1ELISA试剂盒Mouse VCAM-1 ELISA KIT - 小鼠ELISA试剂盒 - 细胞冻存液|胎牛血清|细胞株|细胞培养基|ELISA试剂盒|ECL发光液|国产血清|澳洲血清|完全培养基-上海哈哈体育生物科技有限公司



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    小鼠血管细胞粘附蛋白1ELISA试剂盒Mouse VCAM-1 ELISA KIT
    货号:HM-042
    价格:¥3800.00
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    小鼠血管细胞粘附蛋白1定量分析酶联免疫检测试剂盒

     

    本试剂盒仅供科研使用。用于体外定量检测小鼠血清、血浆或细胞培养上清液中的VCAM-1浓度。使用前请仔细阅读说明书并检查试剂组分是否完整。如有产品包装破损或质量投拆,请在收到货一个月之内联系哈哈体育。

     

    VCAM-1 简介:

    血管细胞粘附蛋白1VCAM1),也叫CD106,属于免疫球蛋白家族的粘附分子。VCAM1715个氨基酸构成的I型跨膜糖蛋白,胞外部分674个氨基酸,跨膜部分22个氨基酸,胞内有19个氨基酸的尾巴。根据不同种裂解方式,VCAM1胞外部分有6Ig样结构域和7Ig样结构域的两个类型。VCAM1 可以在不同种类细胞表面表达,这些种类的细胞包括活化的内皮细胞、巨噬细胞、树突状细胞、神经元细胞、平滑肌细胞、成纤维细胞和卵母细胞等。

    VCAM1与整合素α4β1 (VLA4) α4β7结合,从而发挥许多功能。这此功能包括VCAM1在白细胞的迁移、白细胞粘附内皮细胞、信号传导等生理过程中起作用。VCAM1在沉滞性动脉硬化症和风湿性关节炎中都起作用。

     

    检测原理:

    本试剂盒采用双抗体夹心ELISA法检测样本中VCAM-1的浓度。VCAM-1捕获抗体已预包被于酶标板上,当加入标本或参考品时,其中的VCAM-1会与捕获抗体结合,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。当加入生物素化的抗小鼠VCAM-1抗体后,抗小鼠VCAM-1抗体与VCAM-1接合,形成夹心的免疫复合物,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。随后加入辣根过氧化物酶标记的亲合素。生物素与亲合素特异性结合,亲合素连接的酶就会与夹心的免疫复合物连接起来;其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。最后加入显色剂,若样本中存在VCAM-1将会形成免疫复合物,辣根过氧化物酶会催化无色的显色剂氧化成蓝色物质,在加入终止液后呈黄色。通过酶标仪检测,读其450nm处的OD值,VCAM-1浓度与OD450值之间呈正比,通过参考品绘制标准曲线,对照未知样本中OD值,即可算出标本中VCAM-1浓度。

     

    小鼠VCAM-1定量分析酶联免疫检测试剂盒组成:

     

    组分

    规格(96T/48T)

    小鼠VCAN-1预包被板

    12条/6

    5×标准品稀释液

    20ml/10ml

    小鼠VCAN-1标准品

    2支/1支(冻干)

    小鼠VCAN-1生物素化抗体

    10ml/5ml

    亲和素连接的HRP酶

    10ml/5ml

    浓缩洗涤液 20×

    30ml/15ml

    TMB底物

    10ml/5ml

    中止液

    5ml/3ml

    封板胶纸

    3/2

    说明书

    1

    标本收集:

    1.标本的收集请按下列流程进行操作;

    A.细胞上清标本离心去除悬浮物后即可;

    B.血清标本应是自然凝固后,取上清,避免在冰箱中凝固血液;

    C.血浆标本,推荐用EDTA的方法收集

    D.若待测样本不能及时检测,标本收集后请分装,冻存于-20℃,避免反复冻融。

    2.血清标本不应添加任何防腐剂或抗凝剂;

    3.标本应清澈透明,检测前样本中如有悬浮物应通过离心去除。

    4.请勿使用溶血,高血脂或污染的标本检测,否则结果将不准确。

    注意事项:

    1.试剂盒请保存在28℃。

    2.浓缩洗涤液因在低温下可能有结晶,请水浴加热使结晶完全溶解后再配制工作液。

    3.标准品复溶加样后,剩余部份请丢弃。

    4.底物请勿接触氧化剂和金属。

    5.加样时,请及时更换枪头,避免交叉污染。

    6.严禁混用不同批号的试剂盒组份。

    7.充分混匀对保证反应结果的准性很重要,在加液后请轻轻叩击边缘以保证混匀。

    8.室温反应,请严格控制在2528℃。

    9.洗涤过程是至关重要的,洗涤不充分会使精确度下降并导致结果误差较大。

    10.试验中标准品和样本检测时建议作双复孔。

    11.加样过程中避免气泡的产生。

    12.血清和血浆标本的检测时,检测抗体的孵育时间应适当延长。

     

    检测前准备工作:

    1.试剂盒自冰箱中取出后应置室温(25-28℃)平衡20分钟;每次检测后剩余试剂请及时于2~8℃保存。

    2.将浓缩洗涤液用双蒸水或去离子水稀释(1份加19份水)。

    3.如有5X标准品稀释液,请按所需量用双蒸水或去离子水稀释(1份加4水)。

    4.标准品: 按标签复溶体积加入1X标准品稀释液复溶使VCAM-1终浓度达到8000pg/ml,室温反应,请严格控制在25~28℃,静置15~20分钟后轻轻混悬(建议抽吸几次)待彻底溶解,用标准品稀释液倍比梯度稀释后依次加入检测孔中。(标准曲线取七个点,最高浓度为8000 pg/ml,标准品稀释液直接加入作为0浓度.)

    图片2.png 

    洗涤方法:

    自动洗板机或小鼠工洗板:每孔洗涤液为300ul,注入与吸出间隔15-30秒。洗板5次。最后一次洗板完成后将板倒扣着在厚吸水纸上用力拍干。

     

    实验过程需自备的材料:

    1.不同规格的加样枪及相应的枪头;   

    2.酶标仪;

    3.自动洗板机;                     

    4.去离子水或双蒸水;

     

    操作步骤:

    1.通过计算并确定一次性实验所需的板条数,取出所需板条放置在框架内,暂时用不到板条请放回铝箔袋密封,保存于4℃。

    2.建议设置本底较正孔,即空白孔,设置方法为该孔只加TMB显色液和中止液。每次实验均需做标准品对照并画出标准曲线。

    3. 分别将标本或不同浓度标准品(100ul/)加入相应孔中,用封板胶纸封住反应孔,室温(2528℃)孵育120分钟。如果是血清血浆样本,不同样本稀释比例不一样,一般范围在血清血浆样本稀释1000~15000倍,如无明确范围,建议从1000倍开始稀释,如果样本浓度过高,超过检测范围,请加大稀释倍数后重新稀释检测。

    4.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    5.加入生物素化抗体工作液(100ul/)。用封板胶纸封住反应孔,室温(25-28℃)孵育60分钟。    

    6.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    7.加入亲和素连接的HRP酶工作液(100ul/)。用封板胶纸封住反应孔,避光室温(25-28℃)孵育20分钟。

    8.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    9.加入显色剂TMB100ul/孔,避光室温(25-28℃)孵育20分钟。

    10.加入中止液50ul/,混匀后即刻测量OD450值。

     

    结果判断:

    1.复孔的值在20%的差异范围内结果才有效,复孔的值平均后可作为测量值。

    2.每个标准品或标本的OD值应减去本底校正孔的OD值。

    3.手工绘制标准曲线。以标准品浓度作横坐标,OD值作纵坐标,以平滑线连接各标准品的坐标点。通过标本的OD值可在标准曲线上查出其浓度。

    4.若标本OD值高于标准曲线上限,应适当稀释后重测,计算浓度时应乘以稀释倍数。

     

    典型数值和参考曲线

    浓度pg/ml

    典型OD1

    典型OD2

    OD平均值

    0

    0.093

    0.067

    0.08

    250

    0.245

    0.169

    0.207

    500

    0.396

    0.352

    0.374

    1000

    0.582

    0.546

    0.564

    2000

    0.935

    0.867

    0.901

    4000

    1.487

    1.431

    1.459

    8000

    2.304

    2.104

    2.204

    小鼠VCAM-1参考标准曲线

    图片1.png 

    注意:本图仅供参考,应以同次试验标准品所绘标准曲线计算标本含量。

     

    灵敏度,特异性和重复性:

    1.灵敏度:多次重复结果表明,最小检出量为45.8pg/ml

    2.特异性:与小鼠E-Selectin、ICAM-1、L-Selectin、P-SelectinVCAM-1没有交叉反应。

    3.重复性:板内,板间变异系数均<10%

     

    参考文献:

    1. Feuerbach, D. and J.H.M. Feyen (1997) FEBS Lett. 402:21.

    2. Moy, P. et al. (1993) J. Biol. Chem. 268:8835.

    3. Steffen, B.J. et al. (1996) Am. J. Pathol. 148:1819.

    4. Terry, R.W. et al. (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90:5919.

    5. Simmons, P.J. et al. (1997) Baillieres Clin. Haematol. 10:485.


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