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    人细胞间粘附分子1ELISA试剂盒Human sICAM-1 ELISA KIT
    货号:HH-97
    价格:¥3800.00
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    人细胞间粘附分子1定量分析酶联免疫检测试剂盒

     

    本试剂盒仅供科研使用。用于体外定量检测人血清、血浆、尿液或细胞培养上清液中的ICAM-1浓度。使用前请仔细阅读说明书并检查试剂组分是否完整。如有产品包装破损或质量投拆,请在收到货一个月之内联系哈哈体育。

     

    ICAM-1简介

    细胞间粘附分子1(ICAM-1)是一个属于免疫球蛋白超家族的跨膜蛋白。成熟的ICAM-127个氨基酸信号肽结构,466个氨基酸细胞外区域结构,25个氨基酸的跨膜区域结构,27个氨基酸的胞内区结构共545个氨基酸构成的分子。一般说来,ICAM-1在膜上以二聚体形式存在。溶解的ICAM-1493个氨基酸残基,分子量为78kDa,因为是个糖蛋白,分子质量在110-125KDa之间。ICAM-1在平滑肌细胞、角化细胞、内皮细胞、成纤维细胞、支气管内皮细胞、记忆性T细胞和B细胞、单核细胞、巨噬细胞等都有表达,ICAM-1的表达受炎性细胞因子的调控。ICAM-1的基本功能是在受伤后或压力状态下,使得内皮细胞与白细胞粘附。ICAM-1能与白细胞功能抗原(LFA-1)或巨噬细胞1抗原(Mac-1)结合而起作用。

     

    检测原理:

    本试剂盒采用双抗体夹心ELISA法检测样本中ICAM-1的浓度。ICAM-1捕获抗体已预包被于酶标板上,当加入标本或参考品时,其中的ICAM-1会与捕获抗体结合,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。当加入生物素化的抗人ICAM-1抗体后,抗人ICAM-1抗体与ICAM-1接合,形成夹心的免疫复合物,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。随后加入辣根过氧化物酶标记的亲合素。生物素与亲合素特异性结合,亲合素连接的酶就会与夹心的免疫复合物连接起来;其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。最后加入显色剂,若样本中存在ICAM-1将会形成免疫复合物,辣根过氧化物酶会催化无色的显色剂氧化成蓝色物质,在加入终止液后呈黄色。通过酶标仪检测,读其450nm处的OD值,ICAM-1浓度与OD450值之间呈正比,通过参考品绘制标准曲线,对照未知样本中OD值,即可算出标本中ICAM-1浓度。

     

    ICAM-1定量分析酶联免疫检测试剂盒组成:

    组分

    规格(96T/48T)

    人ICAM-1预包被板

    12条/6

    5×标准品稀释液

    20ml/10ml

    人ICAM-1标准品

    2支/1支(冻干)

    人ICAM-1生物素化抗体

    10ml/5ml

    亲和素连接的HRP酶

    10ml/5ml

    浓缩洗涤液 20×

    30ml/15ml

    TMB底物

    10ml/5ml

    中止液

    5ml/3ml

    封板胶纸

    3/2

    说明书

    1

     

    标本收集:

    1.标本的收集请按下列流程进行操作;

    A.细胞上清标本离心去除悬浮物后即可;

    B.血清标本应是自然凝固后,取上清,避免在冰箱中凝固血液;

    C.血浆标本,推荐用EDTA的方法收集;

    D.若待测样本不能及时检测,标本收集后请分装,冻存于-20℃,避免反复冻融。

    2.血清标本不应添加任何防腐剂或抗凝剂;

    3.标本应清澈透明,检测前样本中如有悬浮物应通过离心去除。

    4.请勿使用溶血,高血脂或污染的标本检测,否则结果将不准确。

     

    注意事项:

    1.试剂盒请保存在28℃。

    2.浓缩洗涤液因在低温下可能有结晶,请水浴加热使结晶完全溶解后再配制工作液。

    3.标准品复溶加样后,剩余部份请丢弃。

    4.底物请勿接触氧化剂和金属。

    5.加样时,请及时更换枪头,避免交叉污染。

    6.严禁混用不同批号的试剂盒组份。

    7.充分混匀对保证反应结果的准性很重要,在加液后请轻轻叩击边缘以保证混匀。

    8.室温反应,请严格控制在25~28℃。

    9.洗涤过程是至关重要的,洗涤不充分会使精确度下降并导致结果误差较大。

    10.试验中标准品和样本检测时建议作双复孔。

    11.加样过程中避免气泡的产生。

    12.血清和血浆标本的检测时,检测抗体的孵育时间应适当延长。

     

    检测前准备工作:

    1.试剂盒自冰箱中取出后应置室温(25~28℃)平衡20分钟;每次检测后剩余试剂请及时于2~8℃保存。

    2.将浓缩洗涤液用双蒸水或去离子水稀释(1份加19份水)。

    3. 5×标准品稀释液用双蒸水或去离子水稀释(1份加4份水)。

    4.标准品: 按标签复溶体积加入1×标准品稀释液复溶使ICAM-1终浓度达到2000pg/ml,室温反应,请严格控制在25~28℃,静置10~15分钟后轻轻混悬(建议抽吸几次)待彻底溶解,用标准品稀释液倍比梯度稀释后依次加入检测孔中。(标准曲线取七个点,最高浓度为2000 pg/ml,标准品稀释液直接加入作为0浓度.)

    图片2.png 

    洗涤方法:

    自动洗板机或人工洗板:每孔洗涤液为300ul,注入与吸出间隔15-30秒。洗板5次。最后一次洗板完成后将板倒扣着在厚吸水纸上用力拍干。

     

    实验过程需自备的材料:

    1.不同规格的加样枪及相应的枪头;   

    2.酶标仪;

    3.自动洗板机;                     

    4.去离子水或双蒸水;

     

    操作步骤:

    1.通过计算并确定一次性实验所需的板条数,取出所需板条放置在框架内,暂时用不到板条请放回铝箔袋密封,保存于4℃。

    2.建议设置本底较正孔,即空白孔,设置方法为该孔只加TMB显色液和中止液。每次实验均需做标准品对照并画出标准曲线。

    3.分别将标本或不同浓度标准品(100ul/孔)加入相应孔中,用封板胶纸封住反应孔,室温(25~28℃)孵育120分钟。对于血清或血浆标本,请用1×标准品稀释液稀释50~2000倍,如无法确定确切的含量,建议从100倍开始稀释。对于尿液样本,请用1×标准品稀释液稀释5~200倍,如无法确定确切的含量,建议从10倍开始稀释。    

    4.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    5.加入生物素化抗体工作液(100ul/)。用封板胶纸封住反应孔,室温(25~28℃)孵育60分钟。   

    6.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    7.加入亲和素连接的HRP酶工作液(100ul/)。用封板胶纸封住反应孔,避光室温(25~28℃)孵育20分钟。

    8.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    9.加入显色剂TMB100ul/孔,避光室温(25~28℃)孵育20分钟。

    10.加入中止液50ul/孔,混匀后即刻测量OD450值。

     

    结果判断:

    1.复孔的值在20%的差异范围内结果才有效,复孔的值平均后可作为测量值。

    2.每个标准品或标本的OD值应减去本底校正孔的OD值。

    3.手工绘制标准曲线。以标准品浓度作横坐标,OD值作纵坐标,以平滑线连接各标准品的坐标点。通过标本的OD值可在标准曲线上查出其浓度。

    4.若标本OD值高于标准曲线上限,应适当稀释后重测,计算浓度时应乘以稀释倍数。

    典型数值和参考曲线

    浓度pg/ml

    典型OD1

    典型OD2

    OD平均值

    0

    0.087

    0.095

    0.091

    62.5

    0.254

    0.27

    0.262

    125

    0.443

    0.469

    0.456

    250

    0.656

    0.696

    0.676

    500

    1.104

    1.132

    1.118

    1000

    1.817

    1.855

    1.836

    2000

    2.615

    2.837

    2.726

    ICAM-1参考标准曲线

    图片1.png 

    注意:本图仅供参考,应以同次试验标准品所绘标准曲线计算标本含量。

     

    灵敏度,特异性和重复性:

    1.灵敏度:多次重复结果表明,最小检出量为37.6pg/ml。

    2.特异性:与人的sCD31、ICAM-2、sE-Selectin、sL-Selectin、sVCAM-1及小鼠的ICAM-1、VCAM-1等没有交叉反应。

    3.重复性:板内,板间变异系数均<10%.

     

    参考文献:

    1. Langston, W. et al. (2007) Free Rad. Biol. Med. 42:720.

    2. Sithu, S.D. et al. (2007) J. Biol. Chem. 282:25010.

    3. Adukpo, S. et al. (2013) PLoS ONE 8:e84181.

    4. Witkowska, A.M. and M.H. Borawska (2004) Eur. Cytokine Netw. 15:91.

    5. Benson, V. et al. (2007) Curr. Mol. Med. 7:219.

    6. Forbes, E. et al. (2006) J. Leukoc. Biol. 80:330.


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