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    人纤溶酶原激活物抑制剂1ELISA试剂盒Human Serpin E1/PAI-1 ELISA KIT
    货号:HH-98
    价格:¥3800.00
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    人纤溶酶原激活物抑制剂1定量分析酶联免疫检测试剂盒

     

    本试剂盒仅供科研使用。用于体外定量检测人血清、血浆或细胞培养上清液中的PAI-1浓度。使用前请仔细阅读说明书并检查试剂组分是否完整。如有产品包装破损或质量投拆,请在收到货一个月之内联系哈哈体育。

     

    PAI-1简介:

    人纤维蛋白溶酶原激活物抑制剂-1PAI-1),也称为丝氨酸蛋白酶抑制剂E1(Serpin E1),是丝氨酸蛋白酶抑制剂超家族中的一员。PAI-1是组织型纤溶酶原激活剂(tissue plasminogen activator,tPA)和尿激酶纤溶酶原激活剂(urokinase plasminogen activator,uPA)的主要抑制剂,活化纤溶酶原而引起纤维蛋白溶解。人的PAI-1是一个378个氨基酸,分子量为42.7 kDa的蛋白。

    PAI-1主要由内皮产生,当然其它组织类型如脂肪组织的细胞也会分泌。脂肪组织、肝及血管等PAI-1的产生明显,当然在某些类型的肿瘤细胞也有PAI-1分泌。

    PAI-1与组织型纤溶酶原激活剂的快速结合,在纤维蛋白溶解的过程中是非常重要的一个调节点。PAI-1的浓度,与纤溶酶原激活剂的降低相关的特点,使得血栓症及其它心血管疾病发生的风险增加。当然,PAI-1已被证明在心血管病与肥胖症二者的关联中起关键的作用。

     

    检测原理:

    本试剂盒采用双抗体夹心ELISA法检测样本中PAI-1的浓度。PAI-1捕获抗体已预包被于酶标板上,当加入标本或参考品时,其中的PAI-1会与捕获抗体结合,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。当加入生物素化的抗人PAI-1抗体后,抗人PAI-1抗体与PAI-1接合,形成夹心的免疫复合物,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。随后加入辣根过氧化物酶标记的亲合素。生物素与亲合素特异性结合,亲合素连接的酶就会与夹心的免疫复合物连接起来;其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。最后加入显色剂,若样本中存在PAI-1将会形成免疫复合物,辣根过氧化物酶会催化无色的显色剂氧化成蓝色物质,在加入终止液后呈黄色。通过酶标仪检测,读其450nm处的OD值,PAI-1浓度与OD450值之间呈正比,通过参考品绘制标准曲线,对照未知样本中OD值,即可算出标本中PAI-1浓度。

     

    PAI-1定量分析酶联免疫检测试剂盒组成:

    组分

    规格(96T/48T)

    人PAI-1预包被板

    12条/6

    5×标准品稀释液

    20ml/10ml

    人PAI-1标准品

    2/1支(冻干)

    人PAI-1生物素化抗体

    10ml/5ml

    亲和素连接的HRP酶

    10ml/5ml

    浓缩洗涤液 20×

    30ml/15ml

    TMB底物

    10ml/5ml

    中止液

    5ml/3ml

    封板胶纸

    3/2

    说明书

    1

     

    标本收集:

    1.标本的收集请按下列流程进行操作;

    A.细胞上清标本离心去除悬浮物后即可;

    B.血清标本应是自然凝固后,取上清,避免在冰箱中凝固血液;

    C.血浆标本,推荐用EDTA的方法收集,不能使用肝素钠抗凝剂;

    D.若待测样本不能及时检测,标本收集后请分装,冻存于-20℃,避免反复冻融。

    2.血清标本不应添加任何防腐剂或抗凝剂;

    3.标本应清澈透明,检测前样本中如有悬浮物应通过离心去除。

    4.请勿使用溶血,高血脂或污染的标本检测,否则结果将不准确。

    注意事项:

    1.试剂盒请保存在28℃。

    2.浓缩洗涤液因在低温下可能有结晶,请水浴加热使结晶完全溶解后再配制工作液。

    3.标准品复溶加样后,剩余部份请丢弃。

    4.底物请勿接触氧化剂和金属。

    5.加样时,请及时更换枪头,避免交叉污染。

    6.严禁混用不同批号的试剂盒组份。

    7.充分混匀对保证反应结果的准性很重要,在加液后请轻轻叩击边缘以保证混匀。

    8.室温反应,请严格控制在25~28℃。

    9.洗涤过程是至关重要的,洗涤不充分会使精确度下降并导致结果误差较大。

    10.试验中标准品和样本检测时建议作双复孔。

    11.加样过程中避免气泡的产生。

    12.血清和血浆标本的检测时,检测抗体的孵育时间应适当延长。

     

    检测前准备工作: 

    1.试剂盒自冰箱中取出后应置室温(25-28℃)平衡20分钟;每次检测后剩余试剂请及时于2~8℃保存。

    2.将浓缩洗涤液用双蒸水或去离子水稀释(1份加19份水)。

    3. 5×标准品稀释液用双蒸水或去离子水稀释(1份加4份水)。

    4.标准品: 按标签复溶体积加入1×标准品稀释液用复溶使PAI-1终浓度达到20pg/ml,室温反应,请严格控制在2528℃,静置15~20分钟后轻轻混悬(建议抽吸几次)待彻底溶解,用标准品稀释液倍比梯度稀释后依次加入检测孔中。(标准曲线取七个点,最高浓度为20pg/ml,标准品稀释液直接加入作为0浓度.

    图片2.png 

    洗涤方法:

    自动洗板机或人工洗板:每孔洗涤液为300ul,注入与吸出间隔15-30秒。洗板5次。最后一次洗板完成后将板倒扣着在厚吸水纸上用力拍干。

     

    实验过程需自备的材料:

    1.不同规格的加样枪及相应的枪头;   

    2.酶标仪;

    3.自动洗板机;                    

    4.去离子水或双蒸水;

     

    操作步骤:

    1.通过计算并确定一次性实验所需的板条数,取出所需板条放置在框架内,暂时用不到板条请放回铝箔袋密封,保存于4℃。

    2.建议设置本底较正孔,即空白孔,设置方法为该孔只加TMB显色液和中止液。每次实验均需做标准品对照并画出标准曲线。

    3.分别将标本或不同浓度标准品(100ul/孔)加入相应孔中,用封板胶纸封住反应孔,室温(25-28℃)孵育120分钟。不同样本中PAI-1含量不一样,试剂盒用来检测血清样本的稀释倍数一般1~250倍稀释,如果无明确范围,需提前预实验,如果超出检测范围,应用标准品稀释液稀释后重新检测。细胞上清稀释倍数一般1~4倍,如果超出检测范围,应用标准品稀释液稀释后重新检测。

    4.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    5.加入生物素化抗体工作液(100ul/)。用封板胶纸封住反应孔,室温(25-28℃)孵育60分钟。    

    6.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    7.加入亲和素连接的HRP酶工作液(100ul/)。用封板胶纸封住反应孔,避光室温(25-28℃)孵育20分钟。

    8.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    9.加入显色剂TMB100ul/孔,避光室温(25-28℃)孵育20分钟。

    10.加入中止液50ul/孔,混匀后即刻测量OD450值。

     

    结果判断:

    1.复孔的值在20%的差异范围内结果才有效,复孔的值平均后可作为测量值。

    2.每个标准品或标本的OD值应减去本底校正孔的OD值。

    3.手工绘制标准曲线。以标准品浓度作横坐标,OD值作纵坐标,以平滑线连接各标准品的坐标点。通过标本的OD值可在标准曲线上查出其浓度。

    4.若标本OD值高于标准曲线上限,应适当稀释后重测,计算浓度时应乘以稀释倍数。

    典型数值和参考曲线

    浓度pg/ml

    典型OD1

    典型OD2

    OD平均值

    0

    0.11

    0.098

    0.104

    0.625

    0.275

    0.251

    0.263

    1.25

    0.487

    0.435

    0.461

    2.5

    0.735

    0.671

    0.703

    5

    1.081

    1.049

    1.065

    10

    1.567

    1.511

    1.539

    20

    2.32

    2.112

    2.216

    PAI-1参考标准曲线

    图片1.png 

    注意:本图仅供参考,应以同次试验标准品所绘标准曲线计算标本含量。

     

    灵敏度,特异性和重复性:

    1.灵敏度:多次重复结果表明,最小检出量为112pg/ml。

    2.特异性:与人的Serpin A1 、Serpin A3 、Serpin A4 、Serpin A5 、Serpin B6 、Serpin B8无交叉反应性。与小鼠的Serpin E1无交叉反应性。

    3.重复性:板内,板间变异系数均<10%.

     

    参考文献:

    1. Fay, W.P. et al. (1997) Blood 90:204.

    2. Alessi, M.C. and I. Juhan-Vague (2006) Arteriosescler. Thromb. Vasc. Biol. 26:2200.

    3. Minor, K.H. et al. (2005) J. Biol. Chem. 280:28711.

    4. Tsai, S.J. (2006) Med. Hypotheses 66:319.

    5. Duffy, M.J. (2002) Clin. Chem. 48:1194.

    6. Cho, S.H. et al. (2004) Exp. Biol. Med. 229:138. 


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